动物实验室
实验动物的处死与取材
一、实验动物的处死
实验动物的处死方法很多,应根据动物实验目的、实验动物品种(品系)、以及需要采集标本的部位等因素,选择不同的处死方法。无论采用哪一种方法,都应遵循安乐死的原则。安乐死是指在不影响动物实验结果的前提下,使实验动物短时间无痛苦地死亡。处死实验动物时应注意,首先要保证实验人员的安全;其次要确认实验动物已经死亡,通过对呼吸、心跳、瞳孔、神经反射等指征的观察,对死亡作出综合判断;再者要注意环保,避免污染环境,还要妥善处理好尸体。
1、颈椎脱臼处死法
此法是将实验动物的颈椎脱臼,断离脊髓致死,为大、小鼠最常用的处死方法。操作时实验人员用右手抓住鼠尾根部并将其提起,放在鼠笼盖或其他粗糙面上,用左手拇指、食指用力向下按压鼠头及颈部,右手抓住鼠尾根部用力拉向后上方,造成颈椎脱臼,脊髓与脑干断离,实验动物立即死亡。
2、断头处死法
此法适用于鼠类等较小的实验动物。操作时,实验人员用左手按住实验动物的背部,拇指夹住实验动物右腋窝,食指和中指夹住左前肢,右手用剪刀在鼠颈部垂直将鼠头剪断,使实验动物因脑脊髓断离且大量出血死亡。
3、放血处死法
此法适用于各种实验动物。具体做法是将实验动物的股动脉、颈动脉、腹主动脉剪断或剪破、刺穿实验动物的心脏放血,导致急性大出血、休克、死亡。犬、猴等大动物应在轻度麻醉状态下,在股三角做横切口,将股动脉、股静脉全部暴露并切断,让血液流出。操作时用自来水不断冲洗切口及血液,既可保持血液畅流无阻,又可保持操作台清洁,使实验动物急性大出血死亡。
4、空气栓塞处死法
处死兔、猫、犬常用此法。向实验动物静脉内注入一定量的空气,形成肺动脉或冠状动脉空气栓塞,或导致心腔内充满气泡,心脏收缩时气泡变小,心脏舒张时气泡变大,从而影响回心血液量和心输出量,引起循环障碍、休克、死亡。空气栓塞处死法注入的空气量,猫和兔为20~50ml,犬为90~160ml。
5、过量麻醉处死法
此法多用于处死豚鼠和家兔。快速过量注射非挥发性麻醉药(投药量为深麻醉时的30倍),或让动物吸入过量的乙醚,使实验动物中枢神经经过过度抑制,导致死亡。
二、病理取材基本要求
1、病理检查应分层次进行,先进行一般外观观察,后剖检观察,再进行光镜详细检查。
2、通常选择正常与病变交界处组织,即包括病变本身及病变周围组织。
3、对照组动物相同器官取材时,选材部位应尽量一致。
4、肉眼看不到的明显病变时,各试验组选取标本位置应一致。
5、所选组织应包括脏器全部层次结构或重要结构,如肾应包括皮质、髓质和肾盂。
6、体积大和分叶的器官,应视不同组织选取多个部位,小器官可整体取材并固定,如淋巴结、扁桃体、甲状腺等。
7、胃肠标本应将内容物冲洗掉,以免内容物影响组织固定,产生自溶。
8、所取材料应尽量保持肉眼标本的完整性,不宜过厚或过薄,一般厚约3~5mm,大小为1.5~2平方厘米。
9、切取组织时不要挤压,使用锋利刀具,少用剪刀,勿选用被器械钳压过的部位。
10、标本取材要熟悉,尽可能快的完成整个过程,特别是易自溶的组织,如肠道、脑、腺体等。
11、剖检记录应客观、详细,用形象描述而不能用诊断的病名来代替。
12、同一实验中的对照组和实验组动物应交叉剖检,严格统一各种条件和操作,尽量避免各种可能的干扰因素。
三、病理剖检基本操作
(一) 常用器械及使用方法:
1、 解剖刀 主要用于切开和分割软组织,刀片宜用血管钳(可持针钳)夹持安装,避免割伤手指。
常用的持刀法有以下4种:执弓式、抓持式、执笔式、反挑式。
2、 手术剪 用于分离与剪开
3、 血管钳 用于分离和钳夹组织,钳夹缝合针和布巾等。
4、 手术镊 用于夹持组织,以利于解剖和缝合。
5、 拉钩 用于牵引和暴露
(二)基本操作:
1、切开:在同一平面上时,先绷紧组织,将刀刃与平面垂直,用力要得当,一次垂直切开,切口整齐而不偏斜,禁止斜切和锯切,以减少损伤。切开多层组织时,一般应按组织层次分层切开,避免损伤深层组织器官。
2、组织分离法:可用锐性分离法,使用刀、剪等锐性器械直接切割,如皮肤、黏膜、精细结构和紧密连结组织的分离;也可用钝性分离法,使用分柄、止血钳、剥离器,手指等分离,如肌肉,疏松结缔组织等的分离。
3、结扎:用丝线打结的方法扎组织和血管,参与缝合器官和皮肤。
4、止血:大量出血导致胸、腹部积血使剖检视野模糊不清,会影响和干扰病变的辨别和取材,因此动物剖检有时要求止血。
(1) 纱布块压迫止血法:剖检过程中,为观察病变性质和部位,辨清组织和神经、血管通路,以及对较广泛的毛细血管渗出,可用纱布按压施行短暂性的止血,但不可用纱布来回擦拭血液,以免损伤组织。
(2) 钳夹止血法:先用纱布块止血,看清出血点或血管后用止血钳的尖端垂直对准出血点,迅速而准确的钳夹并捻转,使血管闭塞而止血。
(3) 结扎止血法:用于动脉出血或较大的血管出血。
四、剖检取材程序
(一)实验动物尸体的固定
通常为仰卧位固定。
(二)剖检顺序
多为先腹腔后胸腔,再脑、脊髓、骨髓、皮肤肌肉等。取材顺序基本与此相同。
(三)检查内容
1、 位置:有无移位、异位
2、 大小:体积增大、缩小或肿大
3、 色泽: 整体或局部颜色的增减改变。
4、 附加物:有无出血、积液、粘连。
5、 质地:硬、韧、软等。
6、 切面:多汁、泡沫状、带血、脓汁、干燥等。
7、 中空器官的黏膜面有无出血、溃疡、增厚、隆起物等。
(四)剖检和取材程序
1、 腹腔和腹腔器官
沿腹部正中线切开剑突至肛门之间的腹前壁,再沿最低位肋骨分别向左右两侧切开侧腹壁至脊柱两旁,完全暴露腹腔器官。观察有无积液、血液和炎性渗出物,如有则用吸管吸出,测量容积并经离心沉淀涂片检查,必要时作细菌培养。检查粘膜是否光滑,有无充血、瘀血、出血、破裂、脓肿、粘连、肿瘤、寄生虫等,膈的紧张度及有无破裂。
(1)脾脏:检查大小、厚薄、硬度、性状、色泽、有否肥厚、破裂等。然后沿长轴将脾切成两半,切面要平整,检查脾小梁、红髓、滤泡的色泽,切面的出血量。
(2)胰腺:检查胰腺色泽和硬度,切面检查有无出血。
(3)胃肠:检查胃的大小、胃肠道浆膜面的色泽,有无粘连、肿瘤、寄生虫结节。然后沿胃大弯、肠系膜附着部依次剪开胃、十二指肠、空肠、回肠、盲肠、结肠、直肠。观察胃内有无异物,内容物的气味及性状,除去内容物,检查黏膜颜色,有无充血、出血、化脓。采用边剪开边观察的办法检查肠管,观察肠内容物数量、性状,有无气体、血液、异物、寄生虫,肠黏膜皱壁有无增厚、水肿、充血、粘液量、溃疡、坏死、淋巴组织性状及有无炎症。
(4)肾脏:首先检查肾脏大小、硬度、被膜是否容易剥离,肾表面的色泽、平滑度,有无疤痕、出血变化。然后检查切面皮质和髓质的色泽,有无瘀血、出血、化脓和梗死。注意观察皮质和髓质交界处的切面是否隆突,以及肾盂、输尿管、肾淋巴结的性状,有无肿瘤及寄生虫等。
(5)肝脏:首先检查肝脏的大小、被膜的性状、边缘的厚薄、实质的硬度和色泽,以及肝淋巴结、血管、肝管等的性状。然后作切面,检查切面的出血量、色泽,肝小叶性状、有无脓肿、肝坏死等变化。
(6)肾上腺:观察外形、大小、色泽和硬度,作纵切和横切,检查皮质和髓质的色泽及有无出血。
2、 盆腔器官
(1)膀胱:检查膀胱的大小、尿量及色泽,黏膜有无出血、炎症和结石等。
(2)雄性生殖器官:检查睾丸、附睾、凝固腺、前列腺有无粘连、出血、水肿、积液等。
(3)雌性生殖器官:沿子宫体背侧剪开子宫角,检查子宫内膜的色泽、有无充血、出血、炎症等,观察卵巢和输卵管有无粘连、出血、水肿、积液等。
3、胸腔、口腔及其器官
用镊子夹住胸骨剑突,剪断膈肌与胸骨的连结,提起胸骨,在胸椎两侧分别剪断左、右侧胸壁的肋骨,取下整个胸壁,打开胸腔,依次取出胸腺和心脏。将下颌骨的两下颌支内侧与舌连结的肌肉切断,将咽、喉、气管、食道与周围组织分离,用镊子夹住气管向上提起,剪断肺与胸膜的连结韧带,然后将咽、喉、气管、食道连同整个肺脏一并取出。如有积液应观察其数量和性状,尽量吸取,测量容积并涂片,检查胸膜色泽,有无出血、充血或粘连。
(1)心脏:剪开心包膜,暴露心脏,注意心包的光泽度及心包内液体的情况,心脏的大小、外形、心外膜情况。自下腔静脉入口处至右心房作直线剖开,从此直线中点沿心脏右缘剖至心尖部, 从距离心尖部与心室间隔右侧 1cm 处平行地剖至肺动脉;检查右心房、右心室、三尖瓣、肺动脉瓣、腱索有否病变。自左右静脉入口处将左心房直线切开,沿心脏左缘剖至心尖部, 再从距离心尖部与心室间隔左侧1cm 处平行地剖开左心室的前壁和主动脉,检查二尖瓣、主动脉瓣、腱索有无病变,左心房、左心室内壁有无出血和感染。自冠状动脉口起剪开前降支和旋支,在主动脉根部右侧,于右心室的心外膜找到右冠状动脉主干,先横切一刀,再剪至后降支;观察有无粥样硬化和血栓等。
(2)口腔:检查牙齿的变化,口腔黏膜的色泽、有无外伤、溃疡和白斑,舌黏膜有无出血、外伤及舌苔的情况。
(3)咽喉:观察喉头、会厌软骨黏膜的色泽、淋巴结的性状及喉囊有无积脓。
(4)鼻腔:检查鼻腔和鼻中隔黏膜的色泽、有无出血、炎性水肿、结节、糜烂、溃疡穿孔及疤痕等。
(5)下颌及颈部淋巴结:检查下颌及颈部淋巴结的大小、硬度、有无出血和化脓等。
(6)气管:检查气管有无出血、黏液量等。
(7)肺脏:检查肺的色泽、有无出血、炎症、肺气肿、肺萎缩、肿瘤等。
(8)其他器官:胸腺,甲状腺,扁桃体等的色泽、有无粘连、出血、水肿等。
四、脏器测量和称重
1、解剖后应迅速将脏器称重,以免水分蒸发造成差异,特别是肾上腺等小器官的称重。
2、脏器称重前应尽量将周围脂肪组织和结缔组织剔除,并用滤纸吸去脏器表面血液及体液,特别是肾上腺、甲状腺、前列腺等较小的器官,更要新鲜称重,防止 器官干燥失水而重量减轻。
3、空腔器官称重前,应清除其腔内液体,如心脏应除去血块。
下一篇: 实验动物的血液采集